将AX3-pFH细胞接入新鲜HL-5C培养基中，在5L通气搅拌发酵罐中上罐培养。每隔6小时测定毛巾外的细胞浓度，PH值，DO值等盘基网柄菌的特性。通过对数据的归纳得出结论。 在四个250mL摇瓶中分别加入25mLHL-5C培养基以及0.8g毛巾，粒径大小约为5mm*5mm*5mm。接种盘基网柄菌细胞，使其初始浓度为0.5-1´105 mL-1，22 ℃、每分钟150转摇床振荡培养。159小时后开始测定，比较不同洗脱方式以确定毛巾内菌体浓度的测定方法。 将摇瓶中毛巾未吸收的液体小心倒出，再分别将吸满液体的毛巾小心转移至50ml离心管中。将四个离心管分为两组，分别多次用20mL磷酸盐缓冲液洗脱。其中第一组洗脱时采用多次以药匙挤压的方式，而第二组采用轻轻震荡的方式。洗脱完毕将毛巾外液体倒出，测定其中的菌体浓度。将各组测得的每次洗脱液的菌体浓度取平均值。 在11个250mL摇瓶中分别加入25mLHL-5C培养基，分别加入粒径大小约为5mm*5mm*5mm的0g、0.4g、0.4g、0.6g、0.6g、0.8g、0.8g、1.0g、1.0g、1.2g、1.2g毛巾。接种盘基网柄菌细胞，使其初始浓度为0.5-1´105 mL-1，22 ℃、每分钟150转摇床振荡培养。约160小时之后，测定毛巾内外菌体浓度以及葡萄糖浓度。 在500mL摇瓶中加入100mLHL-5C培养基，接种盘基网柄菌细胞，使其初始浓度为0.5-1´105 mL-1，22 ℃、每分钟150转摇床振荡培养。约140小时之后，菌体浓度基本达到要求。将摇瓶中菌液摇匀，测定菌体浓度，分装在5个250mL摇瓶中，各加入0.4g，0.6g，0.8g，1.0g干燥毛巾，放入22 ℃转速为150转/分钟的摇床中培养。在30分钟，60分钟，90分钟，150分钟，180分钟，240分钟，330分钟分别取出，摇匀吸取微量毛巾外菌液，测定其菌体浓度。

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